包含常见融合相关的内含子区域和非编码区域,可用于分析实体瘤中的融合位点。
ALK intron 18 - 19 |
BCL2 3'UTR |
BCR intron 8, 13 - 14 |
BRAF intron 7 - 10 |
BRCA1 intron 2, 7 - 8, 12, 16, 19 - 20 |
BRCA2 intron 2 |
CD74 intron 6 - 8 |
EGFR intron 7, 15, 24 - 27 |
ETV4 intron 5 - 6 |
ETV5 intron 6 - 7 |
ETV6 intron 5 - 6 |
EWSR1 intron 6 - 13 |
EZR intron 9 - 12 |
FGFR1 intron 1, 5, 17 |
FGFR2 intron 1, 17 |
FGFR3 intron 17 |
FLI1 intron 3 - 8 |
KIT intron 16 |
KMT2A intron 6 - 11 |
MET intron 1, 14 |
MSH2 intron 5 |
MYB intron 14 |
MYC intron 1 |
NOTCH2 intron 26 |
NTRK1 intron 8 - 10 |
NTRK2 intron 12, 15 |
NTRK3 intron 13 - 14 |
NUTM1 intron 1 |
PDGFB intron 1 |
PDGFRA intron 7, 9, 11 |
RAF1 intron 4 - 9 |
RARA intron 2 |
RET intron 7 - 11 |
ROS1 intron 31 - 35 |
RSPO2 Upstream, 5'UTR, exon 1 - 2, intron 1 |
SDC4 intron 2 |
SLC34A2 intron 4 |
TMPRSS2 intron 1 - 3 |
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BAT-25 |
BAT-26 |
BAT-40 |
BAT-RII |
NR-21 |
NR-22 |
NR-24 |
NR-27 |
MONO-27 |
D2S123 |
D5S346 |
D17S261 |
D17S520 |
D17S250 |
D18S34 |
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捕获表现
变异一致性分析
图 2. NEXome XP Panel v1.0 捕获数据中变异频率与标准品频率的一致性。利用 NadPrep® DNA 通用型文库构建系列试剂盒建库,以 NEXome XP Panel v1.0完成杂交捕获,Vardict 进行变异分析。测序平台:Illumina Novaseq 6000,PE150;MGISEQ-2000,PE150。
注:样本为泛肿瘤 800 gDNA 标准品 (菁良,GW-OGTM800) 。
高置信变异检出率
注:样本为细胞系 gDNA 标准品 (Coriell,NA12878) 。测序模式分别为 Illumina Novaseq 6000,PE150 和 MGISEQ-2000,PE150。
本产品仅限研究使用,不用于临床诊断。
货号 |
管盖
颜色 |
产品名称 |
包装
体积 |
包装/储存温度 |
1001871 |
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NEXome XP Panel v1.0, 96 rxn |
415 μL |
–20℃ |
1001872 |
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NEXome XP Panel v1.0, 16 rxn |
70 μL |
–20℃ |
转录组测序 (RNA-Seq) 文库制备一般分为常规性和链特异性两类,其核心差异在于是否在测序文库中保留转录本的方向性信息。其中,链特异性文库在制备过程中保留了转录本的方向性,测序与下游分析时可判定转录本来源于 DNA 的正义链还是反义链;而常规性文库在 cDNA 合成过程中会丢失方向性信息,测序数据无法直接区分转录方向。与常规性 RNA-Seq 相比,链特异性 RNA-Seq 更能准确地统计转录本数量,明确基因结构,同时识别反义转录本以及发现更多新转录本,因此是研究基因结构与表达调控的重要手段。总体而言,文库制备方法的选择应基于实验目的、成本预算及参考转录组的可用性等因素;若需获取转录本方向性信息,应优先选择链特异性文库。无论选择何种方案,均应严格按照试剂盒使用说明书执行相应操作以确保数据质量。
产品 | 货号 |
NEXome XP Panel v1.0, 16 rxn | 1001872 |
NEXome XP Panel v1.0, 96 rxn | 1001871 |
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